Effect of Hormone Types and Concentrations on In Vitro Multiplication and Growth of Pineapple (Ananas Comosus (L.) Merr.) Cv Moris on Liquid MS Medium

عبد الحميد مختار حمد

doi:10.54172/mjsc.v32i1.91

المؤلفون

عبد الحميد مختار حمد قسم البستنة، كلية الزراعة، جامعة عمر المختار البيضاء- ليبيا

DOI:

https://doi.org/10.54172/mjsc.v32i1.91

الكلمات المفتاحية:

الأناناس، المزرعة السائلة، مضاعفة نموات العزلة

الملخص

اختبر تأثير عشرة تركيزات (0.5 , 1.0 , 1.5 , 2.0 , 2.5 , 3.0 , 3.5 , 4.0 , 4.5 , 5.0) لنوعين من السيتوكينين (BAP و KN) ونوعين من الأوكسين (NAA و IAA) على نموات عزلة لنبات الأناناس صنف موريس في وسط موريشيج وسكوق ((MS السائل المحتوي على 20 جرام في اللتر وحموضته ((pH 5.0 ، استعمال هرمون ( Naphthalene Acetic Acid (NAA أعطى أعلى عدد نموات للعزلة الواحدة (9 نموات) ، العدد الأعلى الثاني (8 نموات) تم الحصول عليها في وسط يحتوي على (BAP) بتركيز 2.0 مليجرام في اللتر ، من بين عشرة تركيزات اختبرت في هذه الدراسة فإن (NAA) كان أفضل من (BAP) في التركيزات الخمسة الأعلى وأقل في حالة التركيزات الخمسة الأدنى لكن في كل التركيزات العشرة كلا الهرمونين أدى إلى نموات أكثر مما لو استعمل في وسط خالٍ من الهرمون ، ما عدا تركيزين فأن هرمون BAPو NAAكان أفضل من هرمون KN، لهذا يمكن القول أن أي من هذه الهرمونات الثلاثة KN و NAA و BAP من الممكن أن يعتبر أفضل من الهرمونين الاخرين اعتماداً على التركيزات التي تستعمل في المقارنة بينها، من الناحية الأخرى فإن هرمون IAA لا يصلح لزراعة عزلات الأناناس إذا كان الوسط في حالة سائلة، حيث إن كل التركيزات العشرة من هرمون IAA أعطت نموات أقل مما تم الحصول عليه من استعمال الوسط الخالي من الهرمون ، لكن استعمال هرمون IAA بتركيز 2.5 مليجرام أدى للحصول على أطول نمو (56 مليمتر) وسبعة تركيزات أدت إلى نموات أطول من تلك في الوسط الخالي من الهرمون (27 مليمتر) في حين كانت أطوال النموات في الأوساط المحتوية على أي من الهرمونات الثلاثة الأخرى أقل من نصف الطول في الوسط الخالي من الهرمون، بهذا فأن هرمون BAP بتركيز 2.0 مليجرام كان أفضل معاملة لمضاعفة عدد النموات من العزلة الواحدة وبينما هرمون IAA بتركيز 2.5 مليجرام كان أفضل معاملة للحصول على أطول نمو .

التنزيلات

بيانات التنزيل غير متوفرة بعد.

المراجع

Akin-Idowu, P. E., Akinyemi S. O. S., and Ibitoye D. O. (2014). Influence of medium type and growth regulators on in vitro micropropagation of pineapple (Ananas comosus (L.), var. Smooth cayenne). African Journal of Plant Science 8(9):450-456.

Almeida, W. A. B. D., Santana G. S., Rodriguez A. P., and Costa M. A. P. D. C. (2002). Optimization of a protocol for the micropropagation of pineapple. Revista Brasileira de Fruticultura 24(2):296-300.

Aydieh, A., Ibrahim M., and Ibrahim A. (2000). In vitro propagation and fruiting of pineapple. Egyptian Journal of Horticulture 27(3):289-304.

Be, L., and Debergh P. (2006). Potential low-cost micropropagation of pineapple (Ananas comosus). South African Journal of Botany 72(2):191-194.

Bhatia, P., and Ashwath N. 2002. Development of a rapid method for micropropagation of a new pineapple [Ananas comosus (l.) Murr.] clone,'Yeppoon gold'. Pages 125-131 in International Symposium on Tropical and Subtropical Fruits 575.

Dutta, I., Bhadra J., Ghosh P., Saha B., and Datta S. (2013). An Efficient and Cost Effective Protocol for In Vitro Propagation of Pineapple. Journal of Ornamental Plants 3(4):229-234.

Fernando, K. (1986). In Vitro propagation of mauritius pineapple. Tropical Agriculturist (Sri Lanka).

Hamad, A., and Taha R. (2003). The effect of hormones on tissue culture of pineapple. Jur Sains 11(1):32-37.

Hamad, A. M., and Taha R. (2008a). Effect of benzylaminopurine (BAP) on in vitro proliferation and growth of pineapple (Ananas comosus L. Merr.) cv. smooth cayenne. Journal of Applied Sciences 8(22):4180-4185.

Hamad, A. M., and Taha R. M. (2008b). The effect of different hormones and incubation periods on in vitro proliferation of pineapple (Ananas comosus L.) Merr cv. Smooth Cayenne) shoot-tip culture. Pak. J. Biol. Sci 11(3):386-391.

Hamad, A. M., and Taha R. M. (2008c). Effect of sequential subcultures on in vitro proliferation capacity and shoot formations pattern of pineapple (Ananas comosus L. Merr.) over different incubation periods. Scientia Horticulturae 117(4):329-334.

Kofi, O., and Adachi T. (1993). Effect of cytokinins on the proliferation of multiple shoots of pineapple in vitro. SABRAO Journal 25(1):59-69.

Mathews, V. H., and Rangan T. (1979). Multiple plantlets in lateral bud and leaf explant in vitro cultures of pineapple. Scientia Horticulturae 11(4):319-328.

Mathews, V. H., and Rangan T. (1981). Growth and regeneration of plantlets in callus cultures of pineapple. Scientia Horticulturae 14(3):227-234.

Nelson, B. J., Asare P. A., and Junior R. A. (2015).In vitro Growth and Multiplication of Pineapple under Different Duration of Sterilization and Different Concentrations of Benzylaminopurine and Sucrose. Biotechnology 14(1):35.

Pérez, G., Yanez E., Mbogholi A., Valle B., Sagarra F., Yabor L., Aragón C., González J., Isidrón M., and Lorenzo J. C. (2012). New pineapple somaclonal variants: P3R5 and Dwarf. Am J Plant Sci 3(1-11.

Soneji, J. R., Rao P., and Mhatre M. (2002). Somaclonal variation in micropropagated dormant axillary buds of pineapple (Ananas comosus L., Merr.). The Journal of Horticultural Science and Biotechnology 77(1):28-32.

Sripaoraya, S., Marchant R., Brian Power J., and Davey M. R. (2003). Plant regeneration by somatic embryogenesis and organogenesis in commercial pineapple (Ananas comosus L.). In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant 39(5):450-454.

Teixeira, S. L., Ribeiro J. M., and Teixeira M. T. (2006). Influence of NaClO on nutrient medium sterilization and on pineapple (Ananas comosus cv Smooth cayenne) behavior. Plant cell, tissue and organ culture 86(3):375-378.

Zuraida, A., Shahnadz A. N., Harteeni A., Roowi S., Radziah C. C., and Sreeramanan S. (2011). A novel approach for rapid micropropagation of maspine pineapple (Ananas comosus L.) shoots using liquid shake culture system. African Journal of Biotechnology 10(19):3859-3866.